phiphilux泛毒素

概述

泛毒素^™ 是 OncoImmunin,Inc. 新的基于活細胞的試劑盒，用于測量細胞毒性淋巴細胞打擊的致死物成功遞送到單個靶細胞。該試劑盒用于具有雙激光（488 和 633 nm）細胞計數(shù)能力的 80 次測定。（對于單激光系統(tǒng)，請聯(lián)系 OncoImmunin,Inc.直接。）

泛毒素^™ 與格蘭毒素^®加！和CyToxiLux^®加！、OncoImmunin,Inc. 的其他單細胞毒性檢測試劑盒，區(qū)別在于細胞滲透性、熒光底物：泛毒素^™ 含有可檢測兩者顆粒酶 B 和上游半胱天冬酶活性，而底物在格蘭毒素^® 旨在僅檢測顆粒酶 B 活性，并在CyToxiLux^® 下游半胱天冬酶活性。與其他兩個套件一樣，泛毒素^™ 可用于操作抗體的選擇通過an 抗體依賴性細胞毒性 (ADCC)低通量和高通量篩選 (HTS) 模式下的機制。

優(yōu)點泛毒素^™, 格蘭毒素^®和CyToxiLux^® 超過其他細胞毒性試驗，例如，⁵¹Cr 釋放、LDH 釋放和 PI 包括：(1) 細胞毒性作為導致細胞死亡（細胞滲透性熒光底物裂解）的基本生化途徑進行測定，而不僅僅是質(zhì)膜滲透性損失及其后遺癥，(2) 敏感性增強，可檢測到針對亞優(yōu)勢表位的相對較弱 CTL 反應(yīng) (3) 快速性（效應(yīng)子：目標共孵育時間為 0.3-2 小時），(4) 可通過流式細胞術(shù)或熒光顯微鏡僅在靶細胞群中進行細胞死亡測定，(5) 結(jié)合免疫表型分析和多參數(shù)流式細胞術(shù)時，可直接觀察和監(jiān)測細胞毒性淋巴細胞介導的主要宿主靶細胞殺傷以及效應(yīng)細胞的生理和命運。

靶細胞被熒光標記（紅色）然后在有熒光的情況下與細胞毒性效應(yīng)細胞共孵育底物。孵育和清洗后，可通過流式細胞儀分析樣本。裂解底物  導致死亡細胞中綠色熒光增加。實時成像也可以用共聚焦顯微鏡進行。

請在開始試驗前閱讀整個方案！

組件供應(yīng)泛毒素^™ 試劑盒（足夠用于 80 含量測定） 由以下機構(gòu)提供的組件 使用者

小瓶 PS（4 瓶）=PanCyToxiLux^™ 底物 溶液 效應(yīng)子 細胞

小瓶 TFL4（1 瓶）=靶細胞與雙激光儀器配合使用的標記物 TFL 稀釋介質(zhì)（1 個小 Eppendorf 管）= 重懸介質(zhì)

針對小瓶 TFL4

靶細胞

清洗緩沖液瓶（1 瓶）

為了從起始靶細胞群中消除非活細胞，例如，由于凍融循環(huán)，請聯(lián)系 OncoImmunin,Inc.請注意：用熒光探針標記細胞表面是不推薦，因為這可能干擾效應(yīng)物-靶標相互作用。當按照本文中的程序使用時，TFL4 確實不標記細胞表面。

格式：可使用 96 孔板或聚丙烯微量離心管進行試驗。

TFL4 的復溶：從小 Eppendorf 管中取 25<unk>l 加入小瓶 TFL4。（復溶后，TFL4應(yīng)儲存在-20^oC.)

中 T= 標記靶細胞的培養(yǎng)基。復溶溶液 1<unk>lTFL4加入靶細胞生長的培養(yǎng)基或生理緩沖液如磷酸鹽緩沖液 (PBS) 中。請注意：大多數(shù)細胞在 PBS 或不含血清的培養(yǎng)基中負荷更有效。如含 10% 血清，推薦TFL4稀釋度為 1:1000，而對于無血清緩沖液，靶細胞標記通常用于1:3000但是，進一步稀釋可能更優(yōu)。宜TFL4單個靶細胞類型的濃度應(yīng)確定為 1:1000（含血清）和 1:3000（無血清培養(yǎng)基）僅為建議的起始點。

洗滌定義為加入體積的培養(yǎng)基/緩沖液，然后離心，然后小心移除試管中的所有液體或輕彈，然后輕輕夯實平板。應(yīng)使用手指輕輕移液和/或輕敲試管，重懸微丸。請勿渦旋.

方案

制備靶細胞

1. 懸浮靶細胞（懸浮或胰蛋白酶化貼壁細胞）于中 T在 2 x 10⁶細胞/ml。（這是建議的濃度。可以并常規(guī)使用較低的數(shù)字。臨界點是能夠收集到 2,000-10,000  分析用靶細胞（見下文）。）如果要用增敏劑（如多肽）沖擊靶標，則應(yīng)在此階段加入后者。（如果肽溶解度需要使用有機助溶劑，后者不應(yīng)超過 0.3% (v/v)，且 溶媒

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應(yīng)包括對照管/孔。）在 37 ℃ 下孵育^oC 下 0.25-1.0 小時。應(yīng)確定單個細胞類型（和致敏劑）的宜時間。請注意：對于 PBL 的上樣，1:1000 稀釋TFL4在 37℃PBS 中 15'^o建議使用 C。如果要將多肽與靶標一起使用，建議是添加TFL4對于后 15’ 的致敏劑暴露。

1. 在此期間，制備效應(yīng)細胞（見下文）。
2. 清洗靶細胞2 次，至少超出生理體積的 10 倍每次清洗的緩沖液/培養(yǎng)基.
3. 標示計數(shù)靶細胞。（此時必須對細胞進行計數(shù)，因為清洗時始終存在細胞損失。）重懸標記靶細胞在 1 x 10 下⁶細胞/ml清洗緩沖液。（根據(jù)實驗設(shè)計，較低濃度的靶細胞可使用。1 x 10⁶對于 1 x 10 的情況，建議使用 cells/ml⁵ 目標/孔或  管將為 使用。）
4. 分配 100<unk>l靶細胞混懸液加至各試驗孔或試管中。

效應(yīng)細胞的制備

1.  制備適當濃度的效應(yīng)細胞清洗緩沖液.   例如，對于終效應(yīng)者目標比值  的 5:1，其中 1 x 10⁵ 目標/孔或管將使用，以 5 x 10 懸浮效應(yīng)細胞⁶ 細胞/ml。

共孵育目標和效應(yīng)細胞

1. 向各孔或含以下物質(zhì)的試管中加入 100<unk>l 效應(yīng)細胞懸液靶細胞除外至少兩個孔，并加入 100

<unk>l 效應(yīng)細胞懸液至至少兩個不含靶細胞.

1. 加入 100<unk>l清洗緩沖液至僅含目標且僅效應(yīng)物使所有樣品達到終體積 200<unk>l.
2. 離心所有樣品，小心移除培養(yǎng)基，并將細胞團塊重懸于 75<unk>l 中底物來自小瓶 PSor 清洗緩沖液對于對照品（不存在底物（適用于以下管 A 和 C）。對于 ADCC，抗體應(yīng)添加至  這次。
3. 重懸后，立即通過短暫離心沉淀細胞（一旦離心機達到細胞正常使用的速度，保持 30 秒，然后停止儀器。）
4. 在 37 ℃ 下孵育^oC 為所需時間點。由于該試驗檢測的是瀕死細胞，而不是具有不可逆損傷質(zhì)膜的細胞，因此給定細胞系統(tǒng)的孵育時間（以及 E:T）應(yīng)顯著短于（和低于）其他方法。對于單個時間點測定，建議的共孵育時間為 1 小時（終端用戶時間通常在 30 min 至 2 小時之間）。相當長的時間不會 推薦。
5. 用 200<unk>l 清洗各樣品清洗緩沖液.
6. 重懸各樣品清洗緩沖液，如果使用酶標儀，轉(zhuǎn)移至流式細胞儀試管中或留在平板中，并通過流式細胞儀進行分析。

樣品總結(jié)：

1. 靶細胞（= 靶細胞 TFL4）
2. 靶細胞+ 底物來自小瓶 PS
3. 效應(yīng)細胞
4. 效應(yīng)細胞 +底物來自小瓶 PS
5. 靶細胞+ 效應(yīng)細胞 +底物來自小瓶 PS（多個樣本）

流式細胞術(shù)：請勿渦旋。  (N.B.：由于本試驗測量的是致死打到靶細胞渦旋  強烈建議不要使用。）

應(yīng)使用與以下激發(fā)和發(fā)射峰一致的通道設(shè)置：

TFL4l_ex: 633 nm, l_em: 657 nm

PS l_ex: 488 nm, l_em: 520 nm

對于為特定探針設(shè)置軟件的儀器：APC針對TFL4和FITC針對PS.

1. 在 FSC 點圖上（x 軸）vs. SSC（y 軸），位置靶細胞（樣本 A）位于右下方并抽取門控 1如下所示（此門控用于刪除無細胞事件）：

1. 使用樣品A 和D 初始設(shè)置APC（用于TFL4）和FITC（用于泛毒素^™）通道，resp.：放置樣品中細胞的峰值A 接近 10³在APC通道和樣品峰D at ca. 10¹在FITC通道。樣品 B 中的細胞應(yīng)位于ca. 10³在APC和 10¹在FITC通道，如下所示。可通過樣品 B 的 PMT 小幅調(diào)整進行優(yōu)化（注：健康（臺盼藍拒染法顯示 > 95% 活性）TFL4-標記靶細胞應(yīng)顯示為單一群體。如果不是，首先嘗試將貼標時間縮短至 15 min。如果仍存在一個以上的種群，則減少TFL4 濃度。）

運行剩余樣本。2,000-10,000靶細胞應(yīng)采集每份樣本進行分析門 2（上圖和下圖）。門 2應(yīng)嵌套在內(nèi)部門控 1。在以下 E:T (NK92:K562) 為 3:1 的示例中，能夠裂解 PanToxiLux 的靶細胞百分比^™底物is 70.3%。這與 4.8%靶細胞單獨的背景（如上圖所示）。請注意：使用 NFL1（OncoImmunin,Inc. 提供的探針）可顯著降低該背景。需要帶有 PacBlue 通道的細胞儀（激發(fā)ca. 405 nm 和發(fā)射ca. 465 nm).

參考文獻泛毒素™

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